分離外泌體的方法之靜水過濾透析：它主要有助于將整個EV從高度稀釋的溶液中分離出來，而無需超速離心過程。280Musante等人展示了用于從尿液樣本中分離EV的HFD方案。在HFD的初始步驟中，用2000×g離心樣品以去除細胞，細菌和碎片作為沉淀。然后，將上清液保存在透析膜（1000kPa）中，1000kPa或更小的顆粒相應地以靜水壓差通過膜。較后，通過離心將外泌體囊泡沉降40,000×g。在HFD分離過程中，外泌體級分在早期階段恢復，與多步離心相比，這被認為是一個優(yōu)勢。與超速離心相比，HFD也被認為是一種有效的方法。外泌體通過調節(jié)免疫系統和疙瘩微環(huán)境，在疙瘩免疫治著中的作用日益受到關注。重慶外泌體分離RNA提取
外泌體分離方法之尺寸排阻色譜分離法：尺寸排阻色譜(SEC)用于根據尺寸而非分子量分離大分子。該技術應用了一種填充有多孔聚合物珠子的柱子，該珠子含有多個孔和隧道。分子根據它們的直徑穿過珠子。小半徑分子通過色譜柱的孔遷移需要更長的時間，而大分子從色譜柱中洗脫得較早。尺寸排阻色譜可以精確分離大分子和小分子。此外，該方法可以應用不同的洗脫溶液。與離心機離心方法相比，色譜分離具有較多的優(yōu)勢，因為通過色譜分離的外泌體不受剪切力的影響，避免了因剪切力所造成的囊泡結構改變。目前，SEC是一種普遍接受的分離血液和尿液中存在的外泌體的技術。此外，SEC方法與超濾相結合已用于分離和分析尿源性外泌體。此外，流場-流分餾結合紫外分析儀和光散射檢測器已被應用于分析外泌體的大小和純度。流場-流分餾結合拋物線和交叉流來分離外泌體。獲得的外泌體已通過電子顯微鏡和質譜檢測。天津組織提取外泌體穩(wěn)定性好超高速離心是常用的外泌體分離方法之一。
差速離心法分離外泌體的實驗原理：外泌體是一種小的(40-100nm)細胞外膜囊泡，目前進行外泌體分離的普遍方法是差速離心法。應用差速離心法和粒徑分析等是細胞外囊泡(EV)研究的重要步驟。已知細胞會分泌許多膜囊泡，這些囊泡的大小、分子含量及其形成機制各不相同具體取決于細胞的類型和當前狀態(tài)。通?？梢员鎰e出三個主要的EV群體：凋亡小體、脫落的囊泡和外泌體.凋亡小體是已知較大的囊泡，直徑為800-5000nm，由凋亡后細胞的細胞質和質膜成分組成。脫落的囊泡和外泌體由非凋亡細胞釋放。脫落的囊泡，也稱為“胞外體”或有時稱為“微泡”，是由質膜起泡產生的，一般的粒徑尺寸范圍為(50–1000nm)。
外泌體分離方法之沉淀分離方法：：基于聚合物的沉淀分離方法是利用超親水聚合物來增強小尺寸顆粒（如外泌體）的沉淀。聚乙二醇的常用濃度在8%到15%之間變化。使用這種方法，將含有外泌體的溶液與聚合物一起孵育過夜，并在約10,000×g下進一步離心。外泌體分離方法之FFF分離法：FFF目前是一種很少使用但前景不錯的一種外泌體分離方法。分離由橫流力驅動，并基于顆粒的分子量或流體動力學直徑。它包括高純度、高效率和短時間處理，但迄今為止，FFF在外泌體分離中的使用案例較少，還有待進一步開發(fā)。外泌體可作為一種疙瘩標志物進行檢測，通過其生物學特征進行診斷和治著。
分離外泌體的方法之免疫親和相互作用：免疫親和法是利用外泌體表面蛋白（抗原）與其靶抗體或分離配體分子之間的免疫親和相互作用原理分離純外泌體的理想方法。它有助于根據其表面標志物分離特定類型的外泌體。基于微孔板的酶聯免疫吸附測定（ELISA）是免疫親和分離試劑盒的一個例子，用于根據外泌體表面標志物分離外泌體。Tetraspanin蛋白是這種分離方法的決定因素?？笴D9、抗CD63和抗CD81是免疫親和外泌體分離中使用的抗體的常見示例。免疫親和法可用于從結腸病細胞中分離外泌體，其效率高于超速離心和密度梯度分離。另外還有一種外泌體分離方法，該方法采用抗體包被的基于磁性顆粒的技術來分離外泌體?，F有的外泌體分離方法可能存在樣品丟失和樣品污染的問題。天津組織提取外泌體穩(wěn)定性好
發(fā)現外泌體轉移可能為疾病治著和預后提供新的治著策略。重慶外泌體分離RNA提取
外泌體分離方法之超速離心法：超速離心基于顆粒的大?。ㄖ亓浚┘捌湓陔x心力（100,000–110,000×g）下的離心沉降。至于去除的細胞碎片和不需要的顆?？梢酝ㄟ^稱為差速離心的幾步慢速離心來獲得。外泌體的純化可以采用蔗糖梯度密度離心純化法：即：在蔗糖梯度(1.13–1.19g/mL)或緩沖液中進行，以實現更高的富集、產量和純度增加。外泌體分離方法之微流控分離法：微流控分離法主要是在微芯片上進行的，這里我們需要提及的是，微流控分離法法可用于外泌體分離（免疫結合和磁結合、過濾），效率相對較高（約90%）。重慶外泌體分離RNA提取
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